怎么做 Western blot？- MedChemExpress

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蛋白质印迹法 (免疫印迹试验) 即 Western Blot，其工作原理是经过 PAGE (根据分子大小) 分离的蛋白质样品，转移到固相载体 (例如**纤维素薄膜) 上，然后将目的蛋白与特异性抗体进行孵化。由于抗体只与目的蛋白结合，未结合的抗体被洗掉，只留下与目的蛋白结合的抗体。最后通过显影检测结合的抗体，条带灰度与蛋白量相对应，因此可以反映蛋白质的表达情况[1]。

（如图 1）图 1. Western blot 的流程图[2]万丈高楼第一步：准备材料

要想实验节奏稳，准备工作那可要妥妥的——缓冲液配制。小 M 在此总结了 WB 实验中所涉及的各类缓冲液的配方，拿走拿走别客气～

表 1. Western blotting 各类缓冲液配方

默默问一句，看完这些配方，您倦了吗？疯狂计算，反复称量，您累了吗？小 M 且在这里为您献上 MCE 多种速溶颗粒产品 (可戳往期→让“速溶颗粒”解放你的双手)，不用犹豫，省时省力，您且受累收好呗！

只要样品做得好，完美结果少不了

配好了溶液，就该轮到把样品的蛋白分离出来了！那么样品处理该注意什么呢？

低温操作！低温操作！低温操作！重要的事说三遍。为最大限度保证蛋白原有结构，所有涉及蛋白的操作都需在冰上进行！

1. 细胞裂解液的制备。在冰上用预冷的 PBS 洗涤细胞。根据每 107 个细胞加 1 mL 裂解缓冲液的比例加入预冷的裂解缓冲液。细胞重悬液在 4 ℃ 下放置 5-10 分钟，期间剧烈震荡 3-4 次，每次 30 秒，实现充分裂解。放入离心机内，12,000 rpm 离心 13-15 分钟。将上清液转移到冰上预冷的离心管中，弃去沉淀。

如果是制备组织裂解液的话，解剖目标组织一定要迅速，建议多次离心去除杂质。

2. 蛋白样本制备。取少量裂解液，通过 BCA 法进行蛋白浓度测定。取出 50 μg 蛋白对应的溶液至离心管中，加入 1×SDS 上样缓冲液调平体积。将样本缓冲液中的细胞裂解液在 100 ℃ 下煮沸 5-10 分钟。

上样跑胶需选择合适凝胶

紧张又忙碌地制备完蛋白样品，然后就是上样和跑胶。(恰恰恰，跑个胶，先检查下作业呗！) 首先是根据蛋白大小选择合适的凝胶，参考下表 2。

然后将蛋白样品上样至 SDS-PAGE 凝胶孔中，记得在样品旁边的孔内点上 marker。细胞裂解液或组织匀浆的总蛋白上样量一般为 20-30 μg，电泳时长一般 1.5 小时，先用 80 V 跑 30分钟，使各样本处于同一水平，待 marker 开始分离后将电压调至 120 V 再跑 1小时。

表 2. 蛋白大小与推荐的凝胶百分比

转膜不要丧气，成败在此一举

顺利到了转膜这一步，已经快完成实验啦~ 转膜分为湿转和半干转两种，转膜时间应根据蛋白大小进行相应调整。

是指转印过程中凝胶和膜被浸入充满转印缓冲液的槽中，适用于大多数各种分子量的常规蛋白转印。半干转是指凝胶和膜被夹在预先润湿缓冲液的滤纸之间，滤纸与平板电极直接接触。湿转使用更广泛，成本低；半干转相对来说更加节约时间，通常只需要 10 min 即可，具体时间视蛋白大小和仪器条件决定。不论是半干转还是湿转，小 M 都有几个共通小 tips 要给你：2 转膜时要注意赶走膜与胶之间的气泡；（如图 2a）

图 2. 转膜的物料顺序：阴极，海绵 (湿转需要)，滤纸，胶，PVDF 膜，滤纸，海绵 (湿转需要)，阳极[3]

胜利的曙光：敷抗体显影通常，在孵育一抗前需要用封闭缓冲液在室温下封闭膜 1 小时，以使膜表面可有效地附着蛋白质或抗体，然后用 PBST 洗涤膜 3 次，每次 5 分钟，接着将封闭后的膜与稀释后的一抗在 4 ℃ 下过夜孵育。(注意注意：加入 ECL 显色液后应全程避光！否则前功尽弃。)。

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参考文献

[1] Mahmood T, Yang PC, et al. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. N Am J Med Sci. 2012 Sep;4(9):429-34.

[3] Wenying Pan, Wei Chen, and Xingyu Jiang, et al. Analytical Chemistry 2010 82 (10), 3974-3976